Einsatz von Tensiden bei der aeroben Kompostierung zur Beschleunigung des Kompostierungsprozesses

2022-06-05 17:29:50

Der Test umfasste zwei Behandlungen mit und ohne Tensid (APG) und Kontrolle (CK), und jede Behandlung wurde dreimal wiederholt. Die Zugabemenge an Tensid APG beträgt 100 mg kg − 1 (Stapelung). Während des Stapelvorgangs wurden Proben aus verschiedenen Teilen des Komposts am 0d, 3D, 5D, 7d, 14d, 21d und 28d des Komposts gesammelt und die mikrobielle Menge und Enzymaktivität des Komposts nach vollständiger Durchmischung bestimmt. Der Test dauerte 30 Tage (vom 11. August bis 9. September 2008).

Die Kompostierungstemperatur wird um 10:00 Uhr und 17:00 Uhr mit einer PT-100-Platinelektrode im zentralen Teil des Komposts gemessen. täglich. Die mikrobielle Menge wurde durch die Methode der Plattenkolonienzählung bestimmt [29]. Die zur Zählung von Bakterien, Actinomyceten und Pilzen verwendeten Kulturmedien waren Rinderextrakt-Pepton-Agar-Medium, Bengalrot-Agar-Medium und modifiziertes Gauss Nr. 1-Medium.

Bestimmungsmethode der Enzymaktivität: Die Ureaseaktivität wird bestimmt, indem man Harnstoff als Substrat für die enzymatische Reaktion nimmt und die Menge an Ammoniak misst, die zur Expression der Ureaseaktivität erzeugt wird. Die Bestimmung der Katalaseaktivität erfolgt nach der Titrationsmethode. Titrieren Sie unter sauren Bedingungen das Wasserstoffperoxid in der Reaktionsmischung mit 0,1 mol L − 1 Kaliumpermanganat. Das Volumen an Wasserstoffperoxid ergibt sich aus der Konzentration und dem Volumen von Kaliumpermanganat und der Konzentration von Wasserstoffperoxid. Der Wasserstoffperoxidverbrauch vor und nach der Reaktion wird verwendet, um die Katalaseaktivität auszudrücken, und die Aktivitätseinheit ist mmol g − 1; Die Invertaseaktivität wurde durch 3,5-Dinitrosalicylsäure-Kolorimetrie bestimmt, nachdem Saccharose durch Invertase hydrolysiert wurde, um reduzierenden Zucker zu erzeugen. Die Aktivitätseinheit war Mg (Glukose) g − 1 24h − 1; Zur Bestimmung der Cellulase-Aktivität wurde die DNS-Methode verwendet, d. h. Carboxymethylcellulose-Natriumsalz wurde als Substrat zur Herstellung von reduzierendem Zucker nach der Cellulase-Hydrolyse verwendet. Anschließend wurde auch die 3,5-Dinitrosalicylsäure-Methode zur Bestimmung des Gehalts an reduzierendem Zucker verwendet. Die Einheit der Cellulaseaktivität war μ g·min−1.

BioTenside sind eine neue Art von Tensiden, die von Mikroorganismen produziert werden. Im Vergleich zu chemischen Tensiden haben Biotenside viele Vorteile, wie etwa geringe Toxizität, Abbaubarkeit, ökologische Verträglichkeit, hohe Effizienz und Stabilität. Daher werden Biotenside nicht nur in der Erdölförderung und im Erdöltransport, in der pharmazeutischen Industrie, der Lebensmittelindustrie, der Textilindustrie und der Kosmetikindustrie häufig eingesetzt. Auch im Bereich der Umwelttechnik, insbesondere bei der Bodensanierung, wird immer mehr Aufmerksamkeit auf ihre Anwendung gelegt. Die Zugabe von Biotensiden im aeroben Kompostierungsprozess fester organischer Abfälle kann die Mikroumgebung der Kompostierung verbessern, den Abbau organischer Stoffe fördern und den Kompostierungsprozess beschleunigen.

Allerdings sind nur wenige Biotenside auf den Markt gekommen und die meisten von ihnen befinden sich vor allem aufgrund ihrer hohen Produktionskosten im Stadium der experimentellen Forschung. Es wird geschätzt, dass Biotenside drei- bis zehnmal so teuer sind wie chemische Tenside. Gleichzeitig sind einige bakterielle Wirkstoffe, die Biotenside produzieren, wie Pseudomonas aeruginosa, verbotene Stämme für die landwirtschaftliche Kompostierung und mikrobielle Düngemittel. Daher ist der Einsatz von Biotensiden in der landwirtschaftlichen Kompostierung stark eingeschränkt. Literaturberichten zufolge kann die Zugabe des chemischen Tensids Tween-80 die Cellulaseaktivität erhöhen und den biologischen Abbau von Cellulose fördern. Über den Einsatz chemischer Tenside bei der aeroben Kompostierung zur Beschleunigung des Kompostierungsprozesses wurde selten berichtet.